ICS 71.100.70
C2682
Y42
团 体 标 准
T/SHRH 022-2019
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化妆品保湿功效评价 体外重组 3D表皮模型
测试方法
Moisturizing efficacy test of cosmetics - In vitro reconstructed
human skin test method
2019-12-30发布 2020-01-30实施
上海日用化学品行业协会 发布 T/SHRH
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T/SHRH 022-2019
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目 次
前言…………………………………………………………………………………………… 2
1.范围………………………………………………………………………………………… 3
2. 规范性引用文件 ………………………………………………………………………… 3
3. 术语和定义 ……………………………………………………………………………… 3
4. 试验原则…………………………………………………………………… …………… 3
5. 试剂及仪器设备 ………………………………………………………………………… 3
6. 试验步骤 ………………………………………………………………………………… 4
7. 结果计算 ………………………………………………………………………………… 5
8. 结果判定 ……………………… ………………………………………………………… 5
附录A 资料性附录 …………………………………………………………………………… 6
附录B 资料性附录 …………………………………………………………………………… 7
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前 言
本标准按照 GB/T1.1-2009给出规则起草。
本标准由上海日用化学品行业协会提出和归口。
本标准的某些内容可能涉及专利,本 标准的发布机构不承担识别这些专利的责任。
本标准起草单位: 广东博溪生物科技有限公司、 上海家化联合股份有限公司、上海上美化妆品有限
公司、上海创元化妆品有限公司、福建片仔癀化妆品有限公司、东阿阿胶股份有限公司、上海绿瑞生
物科技有限公司、云南贝泰妮生物科技集团股份有限公司、上海天祥质量技术服务有限公司、 上海日
用化学品行业协 会。
本标准主要起草人: 李潇、李乐、张艳云 、曹平、陈田 、陈静、廖筝筝、曾四立、吴梅芳 、陈贞明、
谢阿贵、廖峰、姜春鹏、赵奕竹 、马骁、王飞飞、 李琼、金坚、陈亦华。
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化妆品保湿功效评价 体外重组 3D表皮模型测试方法
1 范围
本标准规定了一种基于体外重组 3D表皮模型的化妆品原料及化妆品成品的保湿功效测试方法。
本标准可作为化妆品 保湿功效测试替代方法之一 ,也可结合其他方法对化妆品 保湿功效进行评价 。
本标准适用于 具有生物学深层保湿作用的化妆品原料及成品的 保湿功效测试,不适用于吸湿剂 、
封闭剂类化妆品 。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本
文件,凡不注明日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
化妆品安全技术规范
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本 标准。
体外重组 3D表皮模型 in vitro reconstructed human epidermis model
采用人原代表皮角质形成细胞 ,通过组织工程技术在体外重 组的皮肤组织 ,具有与正常皮肤高度
相似的复层化结构、生理 及代谢功能 。
4 试验原则
4.1 本标准使用的体外 重组 3D表皮模型( EpiKutis®),具有表皮的复层化结构(基底层、棘层、颗
粒层和角质层 )和屏障功能。角质细胞内含有丰富的天然保湿因子( NMF),与皮肤保湿功能高度相
关。
4.2 生物学深层保湿是通过一系列的生物化学作用,提升角质细胞内天然保湿因子含量,达到提升皮
肤保湿功能的作用。 吡咯烷酮羧酸 (Pyrrolidone Carboxylic Acid ,PCA)与尿刊酸( Urocanic acid ,UCA)
是NMF的重要组成成分,通过对 PCA、UCA的含量分析,可以评价皮肤 生物学深层保湿功能。
5 试剂及仪器设备
5.1材料及试剂
5.1.1 体外重组 3D表皮模型(EpiKutis®)。
5.1.2 体外重组 3D表皮模型培养液 (EpiGrowth 培养液)。
5.1.3 蛋白酶 K。
5.1.4 甲酸铵。
5.1.5 甲醇(色谱纯)。
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5.1.6 乙腈(色谱纯)。
5.1.7 吡咯烷酮羧酸标准品(纯度 99%)。
5.1.8 顺式尿刊酸标准品( Cis-UCA)(纯度 99%)。
5.1.9 反式尿刊酸标准品( Trans -UCA)(纯度 99%)。
5.1.10 去离子水(一级)。
5.1.11 磷酸盐缓冲液( PBS)。
5.2 仪器和设备
5.2.1 超净工作台 。
5.2.2 CO 2培养箱:37℃± 1℃, 5±1%CO 2,95%相对湿度 。
5.2.3 高效液相色谱仪 。
5.2.4 低温高速离心机。
5.2.5 氮气吹干仪。
5.2.6 超声波振荡仪。
5.2.7 超纯水仪。
5.2.8 旋涡震荡仪。
5.2.9 分析天平 (精度 0.1mg)。
6 试验步骤
6.1体外重组 3D表皮模型的准备
该步骤在超净工作台中进行。每轮 测试中,空白对照组和各待测 物组均需要 1块6孔板, 3个体
外重组 3D表皮模型。标记 6孔板,在每个 6孔板的第一排孔中各加入 0.9mL EpiGrowth 培养液。将
模型转移至 6孔板中,置于 CO 2培养箱中培养( 37±1℃、 5±1% CO 2、95%相对湿度)。
6.2给药
待测物的给药方式为 模型表面给药,给药量为 25µ L;空白对照组不进行给药 处理。模型给药结束
后,将 6孔板转移 至CO 2培养箱中 ,孵育培养 24h(37± 1℃、5± 1% CO 2、95%相对湿度)。
6.3清洗
模型孵育培养结束后 ,开始清洗程序。用无菌 PBS溶液重复清洗 模型表面 15次,去除 残留的待
测物。
6.4 角质层 NMF提取
将体外重组 3D表皮模型用刀片沿边缘环切后,转移至 1.5mL 离心管中,并在每管中加入 500μL
蛋白酶 K工作液(浓度 0.2mg/mL ),置于恒温培养 箱,50℃酶解 1h。用镊子夹取角质层,置于新的
1.5mL 离心管中,并在每管中加入 250μL甲醇,超声波震荡仪震荡 30min,频率 28KHz。结束后,将
离心管放入低温高速离心机 ,4℃ 14000rpm离心 10min,吸取上清液,转移到新的 离心管中,氮气吹
干仪吹干 , 加入 250μL去离子水 ,超声波震荡30min。 超声结束后, 将离心管放入低温高速离心机 ,4℃
12000rpm离心 10min,吸取194μL上清液到 内衬管中,加入 5μL 1M甲酸铵母液及 2.5μL乙腈震荡混
匀,待上机。
6.5 测定条件
6.5.1吡咯烷酮羧酸( PCA)高效液相色谱测 定条件如下:
a) 色谱柱: C18柱, 5μm,4.6*250mm 。
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b)流动相: 990mL甲酸铵溶液( 20mmol/L )加入 10mL乙腈,搅拌均匀, 0.45μm混合过滤膜过
滤,超声 15min。
c)柱温: 30℃。
d)流动相流速: 0.4mL/min 。
e)进样量: 40μL。
f)检测波长 :210nm。
g)出峰时间:7.1min。
6.5.2尿刊酸( UCA)高效液相色谱测定条件如下:
a) 色谱柱: C18柱, 5μm,4.6*250mm 。
b)流动相: 990mL甲酸铵溶液( 20mmol/L )加入 10mL乙腈,搅拌均匀, 0.45μm混合过滤膜过
滤,超声 15min。
c)柱温: 30℃。
d)流动相流速: 0.4mL/min 。
e)进样量: 40μ
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